СУБПОПУЛЯЦИИ МОБИЛИЗОВАННЫХ ПЕРИФЕРИЧЕСКИХ СТВОЛОВЫХ КРОВЕТВОРНЫХ КЛЕТОК У ОНКОЛОГИЧЕСКИХ БОЛЬНЫХ. СВЯЗЬ С НОЗОЛОГИЧЕСКОЙ ФОРМОЙ ЗАБОЛЕВАНИЯ

DOI: https://doi.org/None

Л.Ю. Гривцова, доктор биологических наук Российский онкологический научный центр им. Н.Н. Блохина, Российская Федерация, 115478, Москва, Каширское ш., д. 24 E-mail: [email protected]

Введение. В настоящее время описан ряд субпопуляций стволовых кроветворных клеток (СКК), клеток-предшественников, значимых для полноты восстановления кроветворения и антигенов, вовлеченных в процессы хоминга, адгезии и мобилизации СКК. Цель исследования. Характеристика субпопуляционного состава СКК и клеток-предшественников на основании их мембранного иммунофенотипа для прогноза полноты восстановления и оценки кинетики процесса мобилизации СКК. Материалы и методы. Проанализирован и сопоставлен субпопуляционный состав периферических мобилизованных СКК у 347 онкогематологических больных (158 – взрослые и 189 – дети) и 54 доноров аллогенных СКК в детской онкогематологической практике. Результаты. Более выраженный эффект мобилизации (суммарное количество CD34+-лейкоцитов) выявлен у взрослых больных множественной миеломой, у детей с саркомой Юинга и нейробластомой, а также у здоровых. В отношении субпопуляционного СКК эффект мобилизации был более выражен у здоровых и у детей с медуллобластомой и нейробластомой. Заключение. На основании иммунологических критериев (CD34+CD38–HLA-DR–Thy-1+) выявлено более полноценное восстановление кроветворения при трансплантации донорских аллогенных СКК и при аутотрансплантации СКК у взрослых с лимфомой Ходжкина, детей с периферическими нейроэктодермальными опухолями, медуллобластомой и нейробластомой.
Ключевые слова: 
мобилизованные периферические стволовые кроветворные клетки, субпопуляции, онкогематология, трансплантация
Для цитирования: 
Гривцова Л.Ю. СУБПОПУЛЯЦИИ МОБИЛИЗОВАННЫХ ПЕРИФЕРИЧЕСКИХ СТВОЛОВЫХ КРОВЕТВОРНЫХ КЛЕТОК У ОНКОЛОГИЧЕСКИХ БОЛЬНЫХ. СВЯЗЬ С НОЗОЛОГИЧЕСКОЙ ФОРМОЙ ЗАБОЛЕВАНИЯ. Молекулярная медицина, 2016; (5): -
Список литературы: 
  1. Greenberg A., Kerr W., Hammer D. Rela-tionship between selectin-mediated rolling of hematopoietic stem and progenitor cells and progression in hematopoietic development. Blood. 2000; 95 (2): 478–86.
  2. Shiftiel S., Lapid K., Kalchenko V., Avigdor A., Goichberg P., Kalinkovich A., Nagler A., Kollet O., Lapidot T.CD45 regulates retention, motility, and numbers of hematopoietic progenitors, and affects osteoclast remodeling of metaphyseal trabecules. J. Exp. Med. 2008; 205 (10): 2381–95.
  3. Shivtiel S., Lapid K., Kalchenko V., Avigdor A., Goichberg P., Kalinkovich A., Nagler A., Kollet O., Lapidot T. CD45 regulates homing and engraftment of immature normal and leukemic human cells in transplanted im-munodeficient mice. Exp. Hematol. 2011; 39 (12): 1161–70.
  4. Driessen R., Johnston H., Nilsson S. Membrane-bound stem cell factor is a key regulator in the initial lodgment of stem cells within the endosteal marrow region. Exp. Hematol. 2003; 31 (12): 1284–91.
  5. Ishikawa F., Livingston A.G., Minamiguchi H., Wingard J.R., Ogawa M. Human cord blood long-term engrafting cells are CD34+CD38–. Leukemia. 2003; 17 (5): 960–4.
  6. Srour E., Tong X., Sung K., Plett P., Rice S., Daggy J., Yiannoutsos C., Abonour R., Or-schell C. Modulation of in vitro proliferation kinetics and primitive hematopoietic po-tential of individual human CD34+CD38–/lo cells in G0. Blood. 2005;105 (8): 3109–16.
  7. Lanza F., Campioni D., Moretti S., Do-minici M., Punturieri M., Focarile E., Pauli S., Dabusti M., Tieghi A., Bassilieri M., Scapoli C., De Angeli C., Galluccio L., Castoldi G. CD34 cell subset and long-term culture colony-forming cells evaluated on both autologous and normal stroma predict long – term hematopoietic engraftment in patients undergoing autologous peripheral blood cell transplantation.. Exp. Hematol. 2001; 29 (12): 1484–93.
  8. Majeti R., Park C.Y., Weissman I.L. Identifica-tion of a hierarchy of multipotent hemat-opoietic progenitors in human cord blood. Cell Stem Cell. 2007; 1: 635–45
  9. Garg S., Madkaikar M., Ghosh K. Inves-tigating cell surface markers on normal hematopoietic stem cells in three different niche conditions. Int. J. Stem Cells. 2013; 6 (2): 129–33.
  10. Humeau L., Bardin F., Maroc C., Alario T., Galindo R., Mannoni P., Chabannon C. Phenotypic, molecular and functional characterisation of human peripheral blood CD34+/Thy-1+ cells. Blood. 1996; 87 (3): 949–55
  11. Dahlberg A., Delaney C., Bernstein I. Ex vivo expansion of human hematopoietic stem and progenitor cells. Blood. 2011; 117 (23): 6083–90.
  12. Seita J., Weissman J.L. Hematopoietic stem cells self-renewal versus differentiation. Wiley Interdisciplinary Reviews. 2010; 2 (6): 640–53.
  13. Kondo M., Wagers A., Manz M., Prohaska S., Scherer D., Beilhack G., Shizuru J., Weiss-man I.L. Biology of hematopoietic stem cells and progenitors: implications for clini-cal applications. Ann. Rev. Immunol. 2003; 21: 759–806.
  14. Schipper L., Brand A., Reniers N., Melief C., Willemze R., Fibbe W.E. Differential matura-tion of megakaryocyte progenitor cells from cord blood and mobilized peripheral blood. Exp. Hematol. 2003; 31 (4): 324–30.