ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЭКСПРЕССИИ FcγRIIIb (CD16) НА ПОВЕРХНОСТИ НЕЙТРОФИЛОВ КРОВИ ПРИВИТЫХ ПРОТИВ ЧУМЫ ЛЮДЕЙ

DOI: https://doi.org/10.29296/24999490-2020-02-06

А.Л. Кравцов, доктор биологических наук, С.А. Бугоркова, доктор медицинских наук, С.Н. Клюева, кандидат биологических наук, В.А. Кожевников, О.М. Кудрявцева, кандидат биологических наук ФКУЗ Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб», Российская Федерация, 410005, Саратов, ул. Университетская, 46 E-mail: [email protected]

Цель. Сравнительная оценка уровня экспрессии FcγRIIIb (СD16) на поверхности нейтрофилов крови привитых и не приви- тых против чумы людей до и после взаимодействия клеток in vitro с аллергеном чумного микроба (пестин). Материал и методы. Исследовали образцы крови 25 не привитых против чумы здоровых доноров, а также 40 добровольцев, однократно и многократно привитых вакциной чумной живой, до и в различные периоды (1, 6 мес) после прививки. Экспрессию CD16 на поверхности нейтрофильных гранулоцитов определяли методом проточной цитометрии до и после инкубации образцов крови в течение 4 ч с пестином. Результаты. У всех обследуемых добровольцев после вакцинации зарегистрировано достоверное повышение уровня экспрес- сии молекулы CD16 на поверхности нейтрофилов крови. После контакта in vitro c пестином только в образцах крови привитых против чумы людей уровень экспрессии молекулы FcγRIIIb (СD16) на поверхности нейтрофилов снижался по сравнению с исход- ным показателем (СD16bright) в 2–3 раза (до значений СD16dim). Заключение. Изменение фенотипа нейтрофилов с СD16bright на СD16dim, выявленное при взаимодействии in vitro с пестином крови привитых против чумы людей, имитирует реакцию этих клеток при анафилактическом шоке, медиатором которого являются специфические IgG, и, по-видимому, отражает результат функционирования молекулы FcγRIIIb (СD16) как триггера нетоза.
Ключевые слова: 
проточная цитометрия
Для цитирования: 
Kravtsov A.L., Bugorkova S.A., Klyueva S.N., Kozhevnikov V.A., Kudryavtseva O.M. ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЭКСПРЕССИИ FcγRIIIb (CD16) НА ПОВЕРХНОСТИ НЕЙТРОФИЛОВ КРОВИ ПРИВИТЫХ ПРОТИВ ЧУМЫ ЛЮДЕЙ. Молекулярная медицина, 2020; (2): -https://doi.org/10.29296/24999490-2020-02-06

Список литературы: 
  1. Нестерова И.В., Колесникова Н.В., Чудилова Г.А., Ломтатидзе Л.В., Ковалева С.В., Евглевский А.А. Нейтрофильные гранулоциты: новый взгляд на «старых игроков» на иммунологическом поле. Иммунология. 2015; 36 (4): 257–65. [Nesterova I.V., Kolesnikova N.V., Chudilova G.A., Lomtatidze L.V., Kovaleva S.V., Evglevskii A.A. Neutrophilic granulocytes: a new look at «old players» on the immunological field. Im- munologiya. 2015; 36 (4): 257–65 (in Russian)]
  2. Eisele N., Lee-Lewis H., Besch-Williford C., Brown C.R., Anderson D.M. Chemokine receptor CXCR2 mediates bacterial clear- ance rather than neutrophil recruitment in a murine model of pneumonic plague. Am. J. Pathol. 2011; 178 (3): 1190–200. https://doi.org/10.1016/j.ajpath.2010.11.067.
  3. МсDonald B., Urrutia R., Yipp B.G., Jenne C.N., Kubes P. Intravascular neutrophil extracellular traps capture bacteria from bloodstream during sepsis. Cell Host Microbe. 2012; 12 (3): 324–33. https://doi. org/10.1016/j.chom.2012.06.011.
  4. Aleman O.R., Mora N., Cortes-Vieyra R., Uribe-Querol E., Rosales C. Differential use of human Fcγ-receptors for inducing neutrophil extracellular traps formation. J. Immunology Research. 2016; 17 pages, ID 2908034, http:// dx.doi.org./10.1155/2016/2908034.
  5. Williams T.E., Nagavajan S., Selvaraj P., Zhu C. Concurrent and independent binding of Fcγ receptors IIa and IIIb to surface-bound IgG. Biophysical J. 2000; 79 (4): 1867–75.
  6. Elghetany M.T. Surface antigen changes during normal neutrophilic development: a critical review. Blood Cell. Mol. Dis. 2002; 28: 260–74.
  7. Нестерова И.В., Чудилова Г.А., Лом- татидзе Л.В., Ковалева С.В., Колесни- кова Н.В., Авдеева М.Г., Русинова Е.В. Дифференцированность вариантов субпопуляций трансформированного фенотипа CD16+CD11b+ нейтрофильных гранулоцитов при острой вирусной и острой бактериальной инфекциях. Имму- нология. 2016; 37 (4): 199–204. https://doi. org/10.18821/0206-4952-2016-37-4-199-204. [Nesterova I.V., Chudilova G.A., Lomtatidze L.V., Kovaleva S.V., Kolesnikova N.V., Avdeeva M.G., Rusinova E.V. Differentiationof variants subpopulations transformed phenotype CD16+CD11b+ neutrophils in acute viral and acute bacterial infec- tions. Immunologiya 2016; 37 (4): 199–204. https://doi.org/10.18821/0206-4952-2016- 37-4-199-204 (in Russian)]
  8. Dudte S.C., Hinnebusch B.J., Shannon J.G. Characterization of Yersinia pestis interactions with human neutrophils in vitro. Front Cell Infect. Microbiology. 2017; 7: 358. https://doi.org/10.3389/fcimb.2017.00358.
  9. Landoni V.I., Chiarella P., Martire-Greco D., Schierloh P., van-Rooijen N., Rearte B., Palermo M.S., Isturiz M.A., Fernandez G.C. Tol- erance to lipopolysaccharide promotes an enhanced neutrophil extracellular traps for- mation leading to a more efficient bacterial clearance in mice. Clinical and Experimental Immunology. 2012; 168: 153–63. https://doi. org/10.1111/j.1365-2249.2012.04560.x.
  10. Фрадкин В.А. Диагностика аллергии реакциями нейтрофилов крови. М.: Ме- дицина, 1985; 176. [Fradkin V.A. Diagnostic of allergy by blood neutrophil reactions. M.: Medicina, 1985; 176 (in Russian)]
  11. Коробкова Е.И. Кожная аллергическая реакция как показатель иммунитета при чуме. Журнал микробиологии, эпидеми- ологии и иммунобиологии. 1955; 4: 40–7. [Korobkova E.I. Skin allergic reaction as an indicator of immunity in plague. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobi- ologii 1955; 4: 40–7 (in Russian)]
  12. Бугоркова С.А., Щуковская Т.Н., Микшис Н.И., Клюева С.Н., Кудрявцева О.М., Кравцов А.Л., Гончарова А.Ю., Кожевни- ков В.А., Санджиев Д.Н., Конушева С.В., Савченко С.П., Щербакова С.А., Кутырев В.В. Комплексное иммунологическое исследование вакцинированных живой чумной вакциной лиц, проживающих на территории Прикаспийского песчаного очага чумы в Республике Калмыкия. Эпидемиология и вакцинопрофилак- тика. 2018; 17 (3): 38–50. https://doi. org/10.31631/2073-3046-2018-17-3-38-50. [Bugorkova S. A., Shchukovskaya T. N., Mikshis N. I., Klyueva S.N., Kudryavtseva O.M., Kravtsov A.L., Goncharova A.Yu., Kozhevnikov V.A., Sandzhiev D.N., Konusheva S.V., Savchenko S.P., Shcherbakova S.A., Kutyrev V.V.Comprehensive immuno- logical study of persons vaccinated with live plague vaccine living on the territory of the Pre-Caspian sand foci of the plague in the republic of Kalmykia. Epidemiologiya i vaktsinoprofilaktika 2018; 17 (3): 38–50. https://doi.org/10.31631/2073-3046-2018- 17-3-38-50 (in Russian)]
  13. Tosi M.F., Berger M. Functional differences between the 40 kDa and 50 to 70 kDa IgG Fc-receptors on human neutrophils revealed by elastase treatment and anti- receptor antibodes. J. Immunology. 1988; 141 (6): 2097–103.
  14. Pham C.T. Neutrophil serine proteases fine-tune the inflammatory response. Int. J. Biochem. Cell Biol. 2008; 40 (6–7): 1317–33.
  15. Papayannopoulos V., Metzier K.D., Hakkim A., Zychlinsky A. Neutrophil elastase and myeloperoxidase regulate the formation of neutrophil extracellular traps. J. Cell Biol. 2010; 191: 677–91.
  16. Khodoun M.V., Strait R., Armstrong L., Yanase N., Finkelman F.D. Identification of markers that distinguish IgE- from IgG-mediated anaphylaxis. PNAS. 2011; 108 (30): 12413–8. https:/doi.org/10.1073/pnas. 1105695108.
  17. Branzk N., Lubojemska A.. Hardison S.E., Wang Q., Guttierrez M.G., Broun G.D., Papa- yannopoulos V. Neutrophil sense microbial size and selectively release neutrophil extra- cellular traps in response to large patho- gens. Nat. Immunol. 2014; 15 (11): 1017–25. https://doi.org/10.1038/ni.2987.
  18. Monteseirin J., Bonilla I., Camacho M.J., Chason P., Vega A., Chaparro A., Conde J., Sobrino F. Specific allergens enhance elastase release in stimulated neutrophils from asthmatic patients. Int. Arch. Allergy Immunology. 2003; 131 (3): 174–81.
  19. Кравцов А.Л., Шмелькова Т.П., Щуковская Т.Н. Влияние противочумной вакцинации на функциональную активность клеток врож- денного иммунитета человека. Проблемы особо опасных инфекций. 2011; 107: 77–80. [Kravtsov A.L., Shmel’kova T.P., Shchukovs- kaya T.N. Effect of anti-plague vaccination on the functional activity of the human in- nate immune cells. Problemy osobo opas- nykh infektsii 2011; 107: 77–80