Молекулярно-биологический анализ клинико-патогенетических особенностей формирования послеоперационных осложнений при боевой травме

DOI: https://doi.org/10.29296/24999490-2023-06-06

Д.В. Соболев(1), М.С. Кишеня(1), А.В. Висягин(1), Е.В. Анчикова(2)
1-Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования
«Донецкий государственный медицинский университет имени М.Горького»,
Российская Федерация, ДНР, Донецк, 283003, пр. Ильича, 16;
2-ООО «МедВитро»,
Российская Федерация, 143401, Московская область,
Красногорский р-н, Красногорск, Подмосковный б-р, д. 11

Введение. Патологические рубцы (ПР) возникают после травматических повреждений, хирургических вмешательств, ожогов и др. приводят к функциональным нарушениям, косметическим дефектам, а также значительно влияют на качество жизни. Результаты исследований по определению генетической детерминированности и связи с клинико-морфологическими показателями ПР имеют противоречивый характер и требуют дальнейшего изучения. Цель исследования: определить связь полиморфизма rs1800471 гена TGFB1 с развитием ПР и изучить влияние генотипов на особенности клинико-морфологического состояния рубцов. Материал и методы. В исследование включены 196 человек (148 мужчин и 48 женщин) в возрасте от 18 до 56 лет после оперативного вмешательства. Сформированы 2 группы: 1-я группа (97 человек) со сроком заживления ран
Ключевые слова: 
патологические рубцы, шкала POSAS, полиморфизм rs1800471 гена TGF-β1, генотип
Для цитирования: 
Соболев Д.В., Кишеня М.С., Висягин А.В., Анчикова Е.В. Молекулярно-биологический анализ клинико-патогенетических особенностей формирования послеоперационных осложнений при боевой травме. Молекулярная медицина, 2023; (6): 41-47https://doi.org/10.29296/24999490-2023-06-06
Список литературы: 
  1. Coentro J.Q, Pugliese E, Hanley G. Current and upcoming therapies to modulate skin scarring and fibrosis. 2019; 146: 37–59.
  2. Huang C., Ogawa R. Systemic factors that shape cutaneous pathological scarring. The FASEB J. 2020; 34 (10): 13171–84.
  3. Huang C. Managing keloid scars: From radiation therapy to actual and potential drug deliveries. Int. Wound J. 2019; 16 (3): 852–9.
  4. Dréno, B. How people with facial acne scars are perceived in society: an online survey. Dermatol.Ther. (Heidelb.) 2016; 6: 207–18.
  5. Behrangi, E. A review of scar treatment related to acne and burn J. of critical reviews. 2020; 7 (4): 714–22.
  6. Rippa A.L, Kalabusheva E.P., Vorotelyak E.A. Regeneration of Dermis: Scarring and Cells Involved. Cells. 2019; 8 (6): 607. DOI: 10.3390/cells8060607.
  7. Eming S.A., Wynn T.A., Martin P. Inflammation and metabolism in tissue repair and regeneration. Science. 2017; 356 (6342): 1026–30. DOI: 10.1126/science.aam7928.
  8. Limandjaja G.C., van den Broek L.J., Breetveld M., Waaijman T., Monstrey S., de Boer E. M. Characterization of In Vitro Reconstructed Human Normotrophic, Hypertrophic, and Keloid Scar Models. Tissue Eng. C: Methods. 2018; 24 (4): 242–53. DOI: 10.1089/ten.tec.2017.0464.
  9. Ghazawi F.M, Zargham R. , Gilardino M.S.: Insights into the Pathophysiology of Hypertrophic Scars and Keloids: How Do They Differ? Adv Skin Wound Care. 2018; 31 (1): 582–95.
  10. Griffin M.F. Understanding the effect of fibroblast heterogeneity on skin fibrosis. Disease Models Mechanisms. 2020; 13 (6): dmm044164.
  11. Huang C., Ogawa R. Systemic factors that shape cutaneous pathological scarring. The FASEB J. 2020; 34 (10): 13171–84.
  12. Hamer M.A. Facial wrinkles in Europeans: a genome-wide association. Journal of Investigative Dermatology. 2018; 138 (8): 1877–80.
  13. Huang Y., Wang Y., Wang X. The Effects of the Transforming Growth Factor-β1 (TGF-β1) Signaling Pathway on Cell Proliferation and Cell Migration are Mediated by Ubiquitin Specific Protease 4 (USP4) in Hypertrophic Scar Tissue and Primary 283 Fibroblast Cultures/ Medical Science Monitor. 2020; 26: e920736.
  14. European convention for the protection of vertebrate animal used for experimental and other scientific purposes. Council of Europe, Strasbourg, 1986: 53.