Особенности возникновения экспериментального остеоартроза, индуцированного дексаметазоном и тальком

DOI: https://doi.org/10.29296/24999490-2023-01-07

С.О. Османова, О.О. Османов, А.А. Алимханова
Дагестанский государственный медицинский университет,
Российская Федерация, 367000, Махачкала, пл. Ленина, д. 1

Введение. Проведено экспериментальное изучение патогенетических механизмов развития воспалительно-деструктивных изменений в суставах на животных моделях с целью разработки новых диагностических стратегий для дальнейшего внедрения полученных результатов в клиническую практику. Целью исследования является изучение механизма возникновения и развития экспериментального остеоартроза (ОА), который был вызван дексаметазоном и тальком, на основе строения, а также нахождение морфометрических и метаболических особенностей скелетных и соединительных тканей коленного сустава крыс. Материал и методы. Авторы занимались исследованием гистологических препаратов коленных суставов, которые были окрашены гематоксилином и эозином Майера, а также альциановым синим (рН 1,0 и 2,5) по Ван–Гизону, Массону и Мэллори. Метаболические свойства хрящевой ткани и костных тканей изучено с помощью исчисления концентрации гиалуроновой кислоты, остеокальцина и коллагена I типа в сыворотке крови лабораторных животных. Результаты. У крыс с остеоартрозом, индуцированным введением дексаметазона и талька, отмечено 50% уменьшение толщины суставного хряща в его нагруженных участках. Также были найдены нарушения пространственного распределения хондроцитов, уменьшение (р
Ключевые слова: 
дексаметазон, суставной хрящ, остеоартроз, крысы, хондроциты
Для цитирования: 
Османова С.О., Османов О.О., Алимханова А.А. Особенности возникновения экспериментального остеоартроза, индуцированного дексаметазоном и тальком. Молекулярная медицина, 2023; (1): 50-55https://doi.org/10.29296/24999490-2023-01-07

Список литературы: 
  1. Лапшина С.А., Мухина Р.Г., Мясоутова Л.И. Остеоартроз: современные проблемы терапии. Русский медицинский журнал. 2016; 24 (2): 95–101. DOI:10.15372/SSMJ20190203. [Lapshina S.A., Mukhina R.G., Myasoutova L.I. Osteoarthritis: modern problems of therapy. Russkiy meditsinskiy zhurnal. 2016; 24 (2): 95–101. DOI: 10.15372/SSMJ20190203 (In Russian)].
  2. Щелкунова Е.И., Воропаева А.А., Русова Т.В., Штопис И.С. Применение экспериментального моделирования при изучении патогенеза остеоартроза (обзор литературы). Сибирский научный медицинский журнал. 2019; 39 (2): 27–39. DOI: 10.15372/SSMJ20190203. [Shchelkunova E.I., Voropaeva A.A., Rusova T.V., Shtopis I.S. Application of experimental modeling in the study of the pathogenesis of osteoarthritis (literature review). Sibirskiy nauchnyy meditsinskiy zhurnal. 2019; 39 (2): 27–39. DOI: 10.15372/SSMJ20190203 (In Russian)].
  3. Алексеева Л.И. Новые представления о патогенезе остеоартрита, роль метаболических нарушений. Ожирение и метаболизм. 2019; 16 (2): 75–82. DOI: 10.14341/omet10274. [Alekseeva L.I. New ideas about the pathogenesis of osteoarthritis, the role of metabolic disorders. Ozhirenie i metabolizm. 2019; 16 (2): 75–82. DOI: 10.14341/omet10274 (In Russian)].
  4. Патент РФ № 95106870, М. кл. G 09 B 23/28 1997. [RF Patent No. 95106870, M. cl. G09B 23/28 1997 (In Russian)].
  5. Kuyinu E.L., Narayanan G., Nair L.S., Laurencin C.T. Animal models of osteoarthritis: classification, update, and measurement of outcomes. Journal of Orthopaedic Surgery and Re- search. 2016; 11: 19. DOI: 10.1186/s13018-016-0346-5.
  6. Mazor M., Best T.M., Cesaro A., Lespessailles E., Toumi H. Osteoarthritis biomarker responses and cartilage adaptation to exercise: A review of animal and human models. Scand. J. Med. Sci. Sports. 2019; 29 (8): 1072–82. DOI: 10.1111/ sms.13435.
  7. Cope P.J., Ourradi K., Li Y., Sharif M. Models of osteoarthritis: the good, the bad and the promising. Osteoarthritis and Carti-lage. 2019; 27 (2): 230–9. DOI: 10.1016/j.joca.2018.09.016.
  8. Новочадов В.В., Крылов П.А., Зайцев В.Г. Неоднородность строения гиалинового хряща коленного сустава у интактных крыс и при экспериментальном остеоартрозе. Вестник Волгоградского государственного университета. Сер. 11: Естественные науки. 2014; 4: 7–16. DOI: 10.15688/jvolsu11.2014.4.1. [Novochadov V.V., Krylov P.A., Zaytsev V.G. Heterogeneity of the structure of the hyaline cartilage of the knee joint in intact rats and in experimental osteoarthrosis. Vestnik Volgogradskogo gosudarstvennogo universiteta. Ser. 11: Estestvennye nauki. 2014; 4: 7–16 DOI: 10.15688/jvolsu11.2014.4.1 (In Russian)].
  9. Lu Z., Luo M., Huang Y. IncRNA‐CIR regulates cell apop- tosis of chondrocytesin osteoarthritis. J. Cell Biochem. 2018; 120: 7229–37. DOI: 10.1002/jcb.27997.
  10. Uthman I., Raynauld J.-P., Haraoui B. Intra-articular therapy in osteoarthritis. Postgrad. Med. J. 2003; 79: 449–53. DOI: 10.1136/pmj.79.934.449.
  11. Szychlinska M.A., Leonardi R., Al-Qahtani M., Mobasheri A., Musumeci G. Altered joint tribology in osteoarthritis: Re- duced lubricin synthesis due to the inflammatory pro- cess. New horizons for therapeutic approaches. Annals of Physical and Rehabilitation Medicine. 2016; 59 (3): 149–56. DOI: 10.1016/j.rehab.2016.03.005.
  12. Glasson S.S., Chambers M.G., van Den Berg W.B., Little C.B. The OARSI histopathology initiative recommendations for histological assessments of osteoarthritis in the mouse. Osteoarthritis and Cartilage. 2010; 18: 17–23. DOI: 10.1016/j. joca.2010.05.025.
  13. Карякина Е.В., Гладкова Е.В., Пучиньян Д.М. Структурно-метаболические особенности суставных тканей в условиях дегенеративной деструкции и ревматоидного воспаления. Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. 2019; 105 (8): 989–1001. DOI: 10.1134/s0869813919080065. [Karyakina E.V., Gladkova E.V., Puchin’yan D.M. Structural and metabolic features of articular tissues under conditions of degenerative destruction and rheumatoid inflammation. Rossiyskiy fiziologicheskiy zhurnal im. I.M. Sechenova. 2019; 105 (8): 989–1001. DOI: 10.1134/ s0869813919080065 (In Russian)].
  14. MacKay J.W., Murray P.J., Kasmai B., Johnson G., Donell S.T., Toms A.P. Subchondral bone in osteoarthritis: association between MRI texture analysis and histomorphometry. Osteo-arthritis and Cartilage. 2017; 25 (5): 700–7. DOI: 10.1016/j. joca.2016.12.011.
  15. Ashraf S., Mapp P.I., Walsh D.A. Contributions of angiogenesis to inflammation, joint damage, and pain in a rat model of osteoarthritis. Arthritis & Rheumatism. 2011; 63 (9): 2700–10. DOI: 10.1002/art.30422.